in search of new markers in chronic lymphocy3c leukemia
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In search of new markers in chronic lymphocy3c leukemia - PowerPoint PPT Presentation

In search of new markers in chronic lymphocy3c leukemia and lymphoma Gianluca Gaidano, MD, PhD Divisione di Ematologia Dipar2mento di Medicina


  1. In ¡search ¡of ¡new ¡markers ¡in ¡ chronic ¡lymphocy3c ¡leukemia ¡and ¡lymphoma ¡ ¡ Gianluca ¡Gaidano, ¡MD, ¡PhD ¡ ¡ Divisione ¡di ¡Ematologia ¡ Dipar2mento ¡di ¡Medicina ¡Traslazionale ¡ Università ¡degli ¡Studi ¡del ¡Piemonte ¡Orientale ¡ Novara-­‑Italia ¡

  2. Decoding ¡the ¡genome ¡of ¡human ¡cancers ¡ The availability of the human genome sequence has raised the possibility that DNA sequencing could become the primary tool to explore cancer genomes Sanger sequencing Candiate gene approach (human bias) Based on amplification of the DNA fragment to be sequenced by DNA polymerase and incorporation of modified nucleotides Allows only a single-gene approach and limited sensitivity Since the early 1990 has dominated the “sequencing scenario” Whole genome (“unbiased”) Next Generation Sequencing (NGS) Is a high-throughput technology that parallelizes the sequencing process, producing thousands or millions of sequences at once Many different methods have been developed Allows a genome-wide approach and high sensitivity Transformed cancer genomics Shendure J Nat Biotech 2008; Meyerson M Nat Gen Rev 2010; Metzker M Nat Rev Gen 2010

  3. NGS reveals potential new therapeutic targets in lymphoid malignancies DLBCL cHL CLL Pasqualucci L, et al., Semin Hematol 2015; Reichel J, et al., Blood 2015; Landau et al, Nature 2015; Puente et al, Nature 2015

  4. Gene expression profiling allows the identification of potential targets not otherwise identified by candidate approaches SMZL BCR NF-kB NOTCH2 signals NF-kB signals Migration to and retention in MZ NOTCH Weak BCR signals MZP B cell MZ B cell NOTCH2 signals Tonic BCR signals NF-kB signals NF-kB signals Weak BCR signals BAFF survival signal T1 B cell T2 B cell FO-II B cell Strong BCR signals NF-kB signals Trøen G, et al. J Mol Diag 2004 Pillai, et al. Nat Rev Immunol Ruiz-Ballesteros E, et al. Blood FO-I B cell 2009 2005

  5. NOTCH1 mutations in CLL S3 γ -secretase 5’ 3’ Pro-NOTCH ICN DSL TM EGF repeats (1-36) LNR HD RAM Ankyrin ER-Golgi NOTCH1 TAD PEST 2556 1 ICN Ubiquitination Degradation DTX1 Missense Nonsense Frameshift 3’ UTR S2 Metalloprotease CLL SPEN RPBJ Degradation Other Co-Activators MAML RPBJ gene expression Arruga F et al. Leukemia 2013 TAD PEST 2155 2556 Arruga F et al. Leukemia 2016 Fabbri G et al. PNAS 2017 Pozzo F et al. Leukemia 2017 50% *** MYC (proliferation) *** DUSP22 (migration) 40% N=18/58 ** (31%) Frequency (%) P <0.001 CD20 (anti CD20) *** 30% N=10/48 ** P <0.05 ** (20%) 20% N=60/539 (11%) N=2/63 N=2/134 10% Fabbri, et al. J Exp Med 2011 (3%) (1%) Puente, et al. Nature 2011 Wang, et al. New Engl J Med 2011 0% Rossi, et al. Blood 2012 MBL F-ref CLL Richter de novo CLL Rasi, et al. Haematologica 2012 syndrome DLBCL diagnosis

  6. Targeting NOTCH1 with Brontictuzumab • A ¡phase ¡I ¡study ¡for ¡pa2ents ¡with ¡previously ¡treated ¡CLL, ¡MCL, ¡DLBCL, ¡anaplas2c ¡ large ¡cell ¡lymphoma, ¡transformed ¡mycosis ¡fungoides, ¡Sezary ¡Syndrome, ¡T-­‑cell ¡ acute ¡lymphoblas2c ¡leukemia, ¡or ¡other ¡hematologic ¡malignancies ¡with ¡known ¡ NOTCH1 ¡muta2ons ¡ • 24 ¡pa2ents ¡were ¡enrolled ¡and ¡23 ¡have ¡been ¡treated ¡in ¡4 ¡dose ¡escala2on ¡cohorts ¡ at ¡doses ¡of ¡0.25 ¡mg/kg ¡every ¡4 ¡weeks ¡(Q4W), ¡0.5 ¡mg/kg ¡Q4W, ¡1 ¡mg/kg ¡Q4W, ¡ and ¡1 ¡mg/kg ¡every ¡2 ¡weeks ¡ • The ¡ most ¡ frequent ¡ treatment-­‑related ¡ adverse ¡ events ¡ of ¡ any ¡ grade ¡ were: ¡ diarrhoea ¡ (22%), ¡ fa2gue ¡ (17%), ¡ anemia ¡ (13%), ¡ abdominal ¡ pain ¡ (9%), ¡ nausea ¡ (9%), ¡vomi2ng ¡(9%) ¡ • One ¡ pa2ents ¡ with ¡ transformed ¡ mycosis ¡ fungoides ¡ had ¡ par2al ¡ response ¡ to ¡ treatment, ¡a^er ¡receiving ¡1 ¡mg/kg ¡Q2W. ¡Two ¡addi2onal ¡pts ¡had ¡stable ¡disease ¡ as ¡best ¡overall ¡response ¡(1 ¡with ¡MCL, ¡and ¡1 ¡with ¡TMF) ¡ • The ¡mAb ¡is ¡well ¡tolerated ¡and ¡has ¡moderate ¡an2tumor ¡ac2vity ¡ Casulo et al, ASH 2016

  7. Muta3ons ¡of ¡genes ¡regula3ng ¡MZ ¡development ¡ characterize ¡~60% ¡SMZL ¡ Endothelial ¡cell ¡of ¡the ¡spleen ¡red ¡pulp ¡ NOTCH2 S1P ¡ SPEN CD40 ¡ NOTCH1 S1PR1 ¡ BAFFR ¡ NOTCH2 ¡ BCR ¡ DTX1 RANK ¡ Integrin ¡ LTBR ¡ SWAP70 EGR1 34% ¡ EGR2 6% ¡ MYD88 32% ¡ NF-­‑kB ¡ IKBKB signaling ¡ SWAP70 Tonic ¡BCR ¡ TNFAIP3 signaling ¡ 4% ¡ NOTCH ¡ BIRC3 signaling ¡ Migra3on ¡& ¡reten3on ¡ within ¡the ¡MZ ¡ TRAF3 MAP3K14 NOTCH ¡ CD79A CARD11 nuclear ¡ NF-­‑kB ¡ membrane ¡ MZ ¡program ¡ SMZL ¡(n=117) ¡ TARGET GENES Genes ¡involved ¡in ¡ marginal ¡zone ¡development ¡ NOTCH ¡ NF-­‑ κ B ¡ BCR ¡ Chroma3n ¡remodeling ¡ ¡ TP53 ¡ pathway ¡ pathway ¡ pathway ¡ and ¡transcrip3onal ¡regula3on ¡ Rossi ¡D, ¡et ¡al. ¡J ¡Exp ¡Med ¡2012 ¡

  8. NOTCH2 ¡is ¡the ¡most ¡frequently ¡mutated ¡gene ¡ (~20%) ¡in ¡SMZL ¡ Nonsense ¡ Frameshi^ ¡ R PEST 1 ¡ 2471 ¡ HD A TAD M EGF ¡like ¡repeats ¡(1-­‑35) ¡ ANKIRIN ¡ TM ¡ repeats ¡ 3’ ¡ 5’ ¡ S3 ¡γ-­‑secretase ¡ • Mutated ¡SMZL=25/117 ¡(21.3%) ¡ Pro-NOTCH ICN DSL ¡ ¡ ¡ER-­‑Golgi ¡ • Hotspot ¡in ¡exon ¡34 ¡ NOTCH2 ICN2 Ubiqui2na2on ¡ Degrada2on ¡ DTX1 • All ¡trunca2ng ¡muta2ons ¡(14 ¡indels; ¡11 ¡nonsense) ¡ S2 ¡Metalloprotease ¡ SPEN • Recurrent ¡p.R2400* ¡(6/25, ¡24% ¡muta2ons) ¡ RPBJ • Soma2c ¡in ¡all ¡instances ¡ Degrada2on ¡ Other Co-Activators MAML RPBJ gene ¡expression ¡ Predicted ¡func3onal ¡consequence ¡of ¡ NOTCH2 ¡muta3ons ¡ Rossi ¡D, ¡et ¡al. ¡J ¡Exp ¡Med. ¡2012 ¡

  9. Receptor ¡tyrosine ¡kinase-­‑like ¡orphan ¡receptor ¡1 ¡ ¡ (ROR1) ¡ • Evolu2onarily ¡conserved, ¡type-­‑I ¡membrane ¡protein ¡serving ¡as ¡ receptor ¡for ¡Wnt5a ¡ • Has ¡a ¡tyrosine-­‑kinase-­‑like ¡and ¡Ser/Thr-­‑rich ¡domains ¡ • Expressed ¡primarily ¡during ¡embryogenesis ¡(oncoembryonic ¡protein) ¡ • ROR1 ¡is ¡expressed ¡on ¡nearly ¡all ¡cases ¡of ¡CLL ¡ ¡ • ROR1 ¡is ¡NOT ¡expressed ¡on ¡CD5 ¡B ¡cells ¡of ¡healthy ¡adults, ¡in ¡normal ¡ adult ¡2ssues ¡and ¡in ¡hematopoie2c ¡stem ¡cells ¡ Fukuda, ¡ et ¡al., ¡PNAS . ¡2014; ¡Zhang ¡ et ¡al., ¡Am ¡J ¡Pathol . ¡2012 ¡

  10. ROR1 ¡pathway ¡ Ju ¡ et ¡al., ¡J ¡Clin ¡Invest. ¡2016 ¡

  11. ROR1 ¡expression ¡promotes ¡CLL ¡cell ¡growth ¡and ¡ affects ¡CLL ¡survival ¡ ROR1 ¡enhances ¡CLL ¡growth ¡in ¡the ¡TCL1 ¡model ¡ ROR1 ¡expresssion ¡affects ¡CLL ¡outcome ¡ Widhopf ¡II, ¡ et ¡al., ¡PNAS . ¡2014; ¡Zhang ¡ et ¡al., ¡Am ¡J ¡Pathol . ¡2012; ¡Cui ¡ et ¡al., ¡Blood ¡2016 ¡

  12. Immunologic ¡targe3ng ¡of ¡ROR1 ¡ An3-­‑ROR1 ¡mAbs ¡reduce ¡spleen ¡size ¡in ¡ROR1-­‑TCL1 ¡animal ¡models ¡ Cirmtuzumab ¡(UC-­‑961): ¡a ¡ humanized ¡IgG1 ¡monoclonal ¡ an3body ¡able ¡to ¡block ¡ROR1 ¡ signaling ¡ Widhopf ¡II, ¡ et ¡al., ¡PNAS . ¡2014 ¡ ¡

  13. Cirmtuzumab ¡phase ¡1 ¡trial ¡in ¡R/R ¡CLL ¡ • Dose-­‑escala2on ¡trial ¡in ¡pa2ents ¡with ¡relapsed/refractory ¡CLL ¡ • 25 ¡pa2ents ¡were ¡enrolled ¡and ¡received ¡four ¡bi-­‑weekly ¡infusions ¡of ¡cirmtuzumab ¡ at ¡doses ¡ranging ¡from ¡0.015 ¡to ¡20mg/kg ¡ • Cirmtuzumab ¡was ¡safe ¡and ¡well-­‑tolerated. ¡There ¡were ¡no ¡drug-­‑related ¡SAE, ¡or ¡ infusion-­‑related ¡reac2ons ¡ • Pharmacokine2cs ¡studies ¡demonstrated ¡that ¡at ¡higher ¡doses ¡was ¡32.4 ¡days ¡(SD ¡ 1.9 ¡ days) ¡ and ¡ cirmtuzumab ¡ levels ¡ remained ¡ detectable ¡ in ¡ the ¡ plasma ¡ un2l ¡ approximately ¡3 ¡months ¡following ¡the ¡final ¡infusion ¡ • 16 ¡of ¡19 ¡evaluable ¡pa2ents ¡had ¡stable ¡disease ¡2 ¡months ¡a^er ¡the ¡final ¡infusion ¡ of ¡the ¡drug ¡and ¡the ¡median ¡2me ¡to ¡requiring ¡next ¡treatment ¡due ¡to ¡progressive ¡ disease ¡was ¡259 ¡days ¡ Choi ¡ et ¡al., ¡Blood . ¡2017 ¡

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